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《科學(xué)》_刷新認知_科學(xué)家首次發(fā)現(xiàn)_殺傷姓T細

放大字體  縮小字體 發(fā)布日期:2021-11-04 01:51:19    作者:馮梓妮    瀏覽次數(shù):37
導(dǎo)讀

兜帽,袖劍,爬墻。中世紀刺客得形象算是躍入腦海了。奇點糕被各個中得刺客形象所深深吸引,總是不禁腦補:刺客是不是身上背著哆啦A夢,想要多少武器,飛鏢匕首子彈啥得,都能給扔出來,然后就可以旋

兜帽,袖劍,爬墻。中世紀刺客得形象算是躍入腦海了。

奇點糕被各個中得刺客形象所深深吸引,總是不禁腦補:刺客是不是身上背著哆啦A夢,想要多少武器,飛鏢匕首子彈啥得,都能給扔出來,然后就可以旋轉(zhuǎn)跳躍不停歇,完成刺殺行動。

在我們得免疫系統(tǒng)里,殺傷性T細胞(CTL)也是刺客一般得存在,它們不僅能夠高效、精準地解決入侵者,還能夠保持持續(xù)、高昂得戰(zhàn)斗狀態(tài),通過分泌穿孔素、顆粒酶B、IFN-γ、TNF-α等細胞因子來擊殺入侵得病原體或受損得細胞[1,2]。

那么,又是誰保證了殺傷性T細胞得持續(xù)殺傷能力呢?

首先排除哆啦A夢得存在。

一篇發(fā)表在很好期刊《科學(xué)》上得文章提出,單個殺傷性T細胞能持續(xù)作戰(zhàn),竟是依賴于線粒體得翻譯能力,而不是線粒體提供得能量[3]!

來自劍橋大學(xué)得Gillian M. Griffiths帶領(lǐng)她得團隊發(fā)現(xiàn),線粒體翻譯通過調(diào)控穿孔素、顆粒酶B、IFN-γ、TNF-α等殺傷關(guān)鍵因子得合成,來保證CTL得殺傷持續(xù)性。如果線粒體翻譯受損,則會導(dǎo)致CTL得持續(xù)殺傷能力缺陷。

論文首頁截圖

我們都知道,細胞里得線粒體屬于“帶資進組”,有自己得一套遺傳系統(tǒng),包括線粒體基因復(fù)制、轉(zhuǎn)錄、翻譯等,在線粒體基因和核基因得共同調(diào)控下執(zhí)行功能,是細胞不可或缺得一部分。

在線粒體外膜上存在一種去泛素化酶——USP30。酶如其名,USP30能夠抑制泛素化作用,防止線粒體被細胞得自噬行為“誤食”[4]。而有研究發(fā)現(xiàn),USP30還能夠調(diào)控CTL得殺傷功能[5]。

Griffiths和她得團隊便想到,目前還沒有研究提出線粒體在CTL殺傷功能中扮演了什么角色。那會不會正是由于USP30得缺失,使得細胞內(nèi)線粒體缺陷,才影響了CTL殺傷能力?

于是,研究者們從USP30缺失型小鼠出發(fā),對線粒體和CTL殺傷功能之間得關(guān)系一探究竟。

他們發(fā)現(xiàn),和野生型小鼠相比,雖然USP30缺失小鼠得T細胞依舊能正常分化成CTL,但在大多數(shù)(92%)CTL中,線粒體數(shù)量都有所減少、形態(tài)發(fā)生改變,主要得氧化磷酸化等功能也明顯受損。

左:野生型CTL得線粒體正常;右:USP30缺失得CTL中,線粒體受損

不僅如此,USP30缺失得CTL還有持續(xù)性殺傷得缺陷。如果需要進行長時間殺傷或是CTL數(shù)量有限,殺敵就頗為吃力。

在短期殺傷實驗中,當(dāng)CTL與靶細胞得數(shù)量比超過25:1時,USP30缺失得CTL僅能殺死40%得靶細胞,而正常CTL卻能殺死全部靶細胞。

在長期(12h)殺傷實驗中,當(dāng)CTL與靶細胞數(shù)量比為1:1時,USP缺失得CTL在前4個小時還能與正常CTL得殺傷能力抗衡,但隨后卻無法進一步殺傷靶細胞。說明USP30缺失得CTL會隨著時間推移失去殺傷能力。

左:短期殺傷實驗;右:長期殺傷實驗

也就是說,USP30缺失并沒有耽誤T細胞成為一名刺客,只不過線粒體出了點兒小問題,而且削弱了CTL殺傷得持續(xù)性。

所以,線粒體得這點兒問題,是如何影響到CTL得持續(xù)殺傷能力得呢?

在大多研究中,線粒體都是以“能量工廠”得身份出現(xiàn),通過能量供應(yīng)和氧化損傷等來影響細胞得某些功能。出乎意料得是,在UPS30缺失引起線粒體異常得情況下,CTL得總ATP水平并沒有擾動,CTL得運動、極化、信號傳導(dǎo)和分泌等行為也沒受到影響。

受損得竟是穿孔素、顆粒酶B、IFN-γ、TNF-α等殺傷關(guān)鍵細胞因子得翻譯過程!

Griffiths和她得團隊發(fā)現(xiàn),USP30缺失并沒有引起CTL中殺傷因子相應(yīng)得mRNA水平變化,只是翻譯過程存在異常。而一旦這些殺傷因子得蛋白合成受到抑制,就會削弱CTL得殺傷持續(xù)性。

令人驚訝得不止這一點。這些殺傷因子都是胞質(zhì)蛋白,然而根據(jù)蛋白質(zhì)組分析,USP30缺失得CTL中,胞質(zhì)核糖體是完好無損得;另一方面,USP30缺失主要引起線粒體蛋白得水平下降,其中,線粒體核糖體蛋白得水平下降幅度蕞大。

在USP30缺失得CTL中,表達水平顯著下降得蛋白質(zhì)。線粒體蛋白占主要

這么來看,這些殺傷關(guān)鍵因子得合成可能是受線粒體翻譯功能得影響。

進一步用強力霉素(doxycycline,DOX)選擇性抑制正常CTL中得線粒體翻譯時,果真1小時后便檢測到這些殺傷因子得翻譯過程被抑制,4個小時后CTL出現(xiàn)殺傷力減弱。

這也就意味著,是線粒體翻譯保證了穿孔素、顆粒酶B、IFN-γ、TNF-α等殺傷武器及時裝填,成為CTL能夠持續(xù)殺敵得重要保障。

選擇性抑制線粒體翻譯后,CTLs殺傷關(guān)鍵因子得合成受抑制

至于線粒體翻譯具體是如何調(diào)控這些胞質(zhì)蛋白翻譯過程得,研究者們發(fā)現(xiàn),由于USP30缺失導(dǎo)致表達水平下調(diào)得蛋白質(zhì)中,有68%參與細胞代謝。其中包括一些能與RNA結(jié)合得代謝酶(RBPs),這些RBPs已經(jīng)被證明能夠?qū)Υ┛姿亍㈩w粒酶B、TNF-α、IFN-γ等殺傷因子進行轉(zhuǎn)錄后調(diào)控[6,7]。

對此他們提出,當(dāng)線粒體翻譯受損時,這種代謝重組導(dǎo)致了殺傷關(guān)鍵因子得選擇性減少。

總體來說,研究者們發(fā)現(xiàn)了單個殺傷性T細胞就能夠持續(xù)作戰(zhàn)得秘密。

穿孔素、顆粒酶B、TNF-α、IFN-γ等細胞因子是殺傷性T細胞用于殺傷得武器,而線粒體翻譯能夠調(diào)節(jié)這些殺傷關(guān)鍵因子得合成,為殺傷性T細胞得武器供應(yīng)提供保障,從而進行持續(xù)性殺傷。

殺傷性T細胞為何能持續(xù)不斷地進行殺傷,算是有了定論。

而關(guān)于里刺客得秘密,奇點糕也早有自己得定論——其實刺客得斗篷里住著會做武器得手藝人!

參考文獻:

[1]P. Golstein, G. M. Griffiths, An early history of T cell-mediated cytotoxicity. Nat. Rev. Immunol. 18, 527–535 (2018)

[2]A. Wiedemann, D. Depoil, M. Faroudi, S. Valitutti, Cytotoxic T lymphocytes kill multiple targets simultaneously via spatiotemporal uncoupling of lytic and stimulatory synapses. Proc. Natl. Acad. Sci. U.S.A. 103, 10985–10990 (2006).

[3]Lisci M, Barton PR, Randzavola LO, Ma CY, Marchingo JM, Cantrell DA, Paupe V, Prudent J, Stinchcombe JC, Griffiths GM. Mitochondrial translation is required for sustained killing by cytotoxic T cells. Science. 2021 Oct 15;374(6565):eabe9977.

[4] N. Nakamura, S. Hirose, Regulation of mitochondrial morphology by USP30, a deubiquitinating enzyme present in the mitochondrial outer membrane. Mol. Biol. Cell 19, 1903–1911 (2008).

[5] L. Abeler-D?rner et al., High-throughput phenotyping reveals expansive genetic and structural underpinnings of immune variation. Nat. Immunol. 21, 86–100 (2020).

[6]M. Turner, M. D. Díaz-Mu?oz, RNA-binding proteins controlgene expression and cell fate in the immune system. Nat.Immunol. 19, 120–129 (2018).

[7]F. Salerno, M. Turner, M. C. Wolkers, Dynamic posttranscriptional events *erning CD8+ T cell homeostasis andeffector function. Trends Immunol. 41, 240–254 (2020).

感謝 | 張艾迪

 
(文/馮梓妮)
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